P物质对体外培养成骨细胞增殖和活性的影响(一)
详细内容
【关键词】 骨细胞
Effect of substance P on proliferation and activity of osteoblasts in vitro
【Abstract】 AIM: To observe the effect of substance P (SP) on the proliferation and activity of osteoblasts cultured in vitro. METHODS: The calvarium bone of newborn rats was digested with bacterial collagenase and cultured to obtain osteoblasts and SP with different concentrations was then added. The proliferation and activity changes of the osteoblasts were identified by counting the cells, determining the ALP activity and observing the changes of cell cycle. RESULTS: SP of 1×10-12-1×10-6 mol/L had enhancing effects on the proliferation and activity of osteoblasts, while the concentration of 1×10-8 mol/L had the strongest enhancing effects. CONCLUSION: SP has enhancing effects on the proliferation and activity of osteoblasts.
【Keywords】 substance P; osteoblast; proliferation; activity
【摘要】 目的: 观察P物质(substance P,SP)对体外培养的成骨细胞增殖和活性的影响. 方法: 采用新生大鼠颅盖骨消化法培养成骨细胞,再加入不同浓度的SP,观察细胞生长数量,测定碱性磷酸酶活性及观察细胞周期变化. 结果: 浓度范围从1×10-12~1×10-6 mol/L的SP对成骨细胞的增殖和活性都有促进作用,在浓度为1×10-8 mol/L对成骨细胞增殖和活性的促进作用最强. 结论: SP对成骨细胞增殖和活性有促进作用.
【关键词】 P物质;成骨细胞;增殖;活性
0引言
P物质(substance P,SP)是最早发现的神经肽,已经证实SP神经肽免疫阳性神经纤维的变化贯穿于正畸牙周组织的破坏吸收以及再生修复的整个过程. 并且主要是SP,降钙素基因相关肽(CGRP)参与了牙槽骨的改建. SP主要通过与它的受体Neurokinin1受体(NK1受体)结合发挥调节作用. 但SP在正畸牙槽骨改建过程中有何作用,目前还不十分清楚. 我们通过体外培养大鼠成骨细胞,观察SP对成骨细胞增殖和活性的影响,以期为揭示SP正畸牙槽骨的改建作用和机制提供依据.
1材料和方法
1.1材料
DMEM培养液(Gibco公司),新生牛血清(杭州四季青生物制品公司),MTT(Sigma公司),碱性磷酸酶试剂盒(北京中生北控生物科技股份有限公司),Triton X100(华美公司),SP(Sigma公司),DNAprep Regain Kit(BeckmanCoulter公司);酶联免疫检测仪(华东电子管厂),ELITE ESP型流式细胞仪(BeckmanCoulter公司).
1.2方法
1.2.1成骨细胞的培养取出生24 h内的SD大鼠(购于第四军医大学实验动物中心)为实验对象,采用颅盖骨消化法培养成骨细胞. 待细胞长满培养瓶壁时传代培养,传至第2代时用差速贴壁法除去成纤维细胞.
1.2.2成骨细胞增殖检测─细胞计数法将第3代的成骨细胞用胰蛋白酶消化,用含100 mL/L血清的DMEM培养基稀释成5×107/L的细胞悬液,以每孔1 mL接种于24孔培养板. 培养24 h,然后更换为含有不同浓度SP的培养基继续培养〔终浓度为0(对照),1×10-12,1×10-10,1×10-8,1×10-6 mol/L〕,每浓度6个平行孔,48 h后消化,计数.
1.2.3成骨细胞增殖检测─MTT法将第4代的成骨细胞消化,并稀释成5×107/L的细胞悬液,以每孔200 μL接种于96孔培养板. 培养24 h,然后更换为含有不同浓度的SP培养基继续培养,每浓度6个平行孔,常规MTT法测量,使用酶联免疫检测仪测量A490 nm值.
1.2.4成骨细胞碱性磷酸酶(ALP)活性检测细胞处理方法同MTT法,用不同浓度的SP培养基培养,每浓度6个平行孔,常规ALP活性检测法检测,通过酶联免疫仪测量A410 nm值.
1.2.5成骨细胞的细胞周期检测将第3代的成骨细胞消化后稀释,每50 mL培养瓶接种5 mL细胞悬液. 培养24 h,然后更换为含有不同浓度SP的培养基继续培养48 h,再次消化,洗涤,固定,4℃过夜. 调整细胞数在1×109/L,各样本加入DNAprep stain染液500 μL,避光染色30 min,用ELITE ESP型流式细胞仪测定DNA含量,并用Multicycle软件分析细胞周期分布情况.
统计学处理:数据以x±s表示,使用SPSS 10.0 for Windows统计软件处理,其中细胞计数用非参数统计,MTT和ALP用方差分析(ANOVA)统计.
2结果
SP在1×10-10,1×10-8,1×10-6 mol/L时,对细胞计数结果影响较大,与对照组均有显著差异,在1×10-8 mol/L时对MTT计数及ALP活性结果影响最大,其A值与对照组有显著差异(P0.01, 表1). 当SP在1×10-8 mol/L时,对细胞周期影响最大,S+G2M期细胞数量最多(表2).表1成骨细胞细胞计数、MTT、碱性磷酸酶活性测定(略)表2成骨细胞的细胞周期测定(略)